Moraxella Catarrhalis

Características generales

• Diplococos GRAM negativos, comúnmente aglutinados.
• Aerobio.
• Oxidasa (fuertes) y catalasa positiva.
• Tercer agente más importante en el tracto respiratorio. En tracto respiratorio superior de niños y ancianos y bajo en adultos.
• El 90% de las cepas producen beta-lactamasas.
• Pleomórficos.
• No esporulados.
• Cápsula variable.
• Inmóviles.
• Inertes en O/F.
• Temperatura óptima 33-35°C.
• Otros prefieren el nombre Branhamella catarrhalis.
• M. catarrhalis es un importante patógeno del tracto respiratorio humano, mientras que las especies de Moraxella rara vez causan infección en humanos. 

En 1970, basándose en la diferencia en el contenido de ácidos grasos y mediante estudios de hibridación de ADN se demostró la escasa homología que existía entre N. catarrhalis y las llamadas "verdaderas" especies de Neisseria, estando, más cercana al género Acinetobacter. Así pues, fue reclasificada y transferida al género Moraxella.

El género Moraxella engloba cocos y bacilos cortos, Bovre propone que Branhamella engloba cocos y Moraxella para los bacilos cortos.

Las especies de Moraxella constituyen parte de la flora normal de las superficies mucosas y se considera que tienen bajo potencial patógeno. Son muy frecuentes en el tracto respiratorio y menos comunes en el genital; así mismo en ocasiones pueden producir infecciones sistémicas.

Antecedentes historicos

1896 Alemania como Micrococcus catarrhalis por Pfeiffer.

1950 recibir el nombre de Neisseria catarrhalis.

1963 Berger Neisseria cinerea y Neisseria catarrhalis.

1970 la especie fue renombrada Branhamella catarrhalis.

1984 Bovre sugiere cambiar el nombre y se reasigno al género Moraxella

Patologías

Niños:

• Otitis media
• Sinusitis
• Bacteremia
• meningitis

Adultos:

• Exacerbaciones en pacientes con EPOC
• Neumonía en ancianos
• Infeccciones nosocomiales

Factores de virulencia de Moraxella catarrhalis

• Lípido A (LOS).
• Peptidoglucano.
• Proteínas de la membrana externa.
• Fimbrias.
• Cápsula.
• Proteínas reguladoras del hierro.
• Resistencia al complemento.
• Biofilm (los biofilms son comunidades de microorganismos que crecen en una matriz de exo-polisacáridos) [bacterias sésiles, matriz polimérica extracelular, agua, proteinas, ácidos nucleicos, poductos de lisis, materiales no bacterianos, iones metálicos o cationes bivalentes] "1. adsorción de moléculas órganicas y acondicionamiento de la superficie. 2. adhesión reversible. 3. adhesión irreversible, comunicación intracelular y producción de EPS. 4. maduración. 5. desprendimiento". Sirve de alimento, protección y baja tasa de crecimiento.
• Adehrencia al epitelio y matriz extracelular.
• Evasión del sistema inmune.
• Adquisición de nutrientes.

LOS es uno de los componentes principales de la membrana externa y se considera como un factor de virulencia importante. Este se conecta con el lipido A por medio de Kdo. LOS es diferente de los diferentes polisacaridos tipicos de las bacterias GRAM negativos. Existen 3 serotipos A. B y C. Entre las diferencias que presenta respecto al LPS es su porción hidrofilica esta unida al grupo R.

Diagnóstico

Se diagnóstica a partir de la tinción GRAM, crecimiento y pruebas bioquímicas. Crece en 24-48 horas en medios comunes como agar sangre y agar chocolate, formando colonias redondas, opacas, convexas, y de color gris. Fenomeno stick positivo.

• Ausencia de pigmentación en agar sangre.
• Catalasa y oxidasa positia.
• DNAsa.
• Hidrólisis de la tributirina.
• Ausencia de producción de ácido a partir de carbohidratos.
• Reducción de nitratos a nitritos.
• Siembra en agar cistina-triptosa (CTA) con azúcares.  Positivo para glucosa.
• Gonochek II (Identificación de β – galactosidasa, γ – glutamilaminopeptidasa y prolil-hidroxiprolil aminopeptidasa) La ausencia de un producto coloreado después de finalizada la prueba proporciona una identificación presuntiva de M. catarrhalis.

La resistencia a los β-lactámicos puede estar codificada genéticamente en el cromosoma bacteriano o bien por plásmidos; en este caso, se permite la transferencia de la resistencia entre bacterias de la misma especie y aún entre bacterias de diferentes géneros y especies. Esto se detecta mediante la producción de ácido  penicilóico.

• Método acidométrico. Denota un cambio de pH que se visualiza por un cambio de color del indicador rojo de fenol.
• Método yodométrico. Este método se basa en que el ácido penicilóico producido por la acción de la enzima βlactamasa sobre el anillo betalactámico de la penicilina reduce el yodo a yoduro decolorando la mezcla del almidónyodo empleada para visualizar la reacción.
• Método de la cefalosporina cromogénica (cefinasa) Se basa en el cambio de color de una cefalosporina incolora a un color rosa, en presencia de la β-lactamasa.
• La mayoría de los laboratorios han adoptado esta última prueba por la facilidad del procedimiento y lo económica de la prueba.
• Método cromogénico: Se basa en el cambio de color a rojo de una cefalosporina cromogénica (nitrocefina), cuando la fracción amida del compuesto unida al anillo betalactámico es hidrolizada por la β-lactamasa.

Serotipos

Tratamiento

Las cepas de M. catarrhalis son uniformemente sensibles a las quinolonas, amoxicilina-clavulánico, cefalosporinas, ticarcilina, piperacilina, macrólidos, cloranfenicol y aminoglucósidos. 

Epidemiología

El serotipo mas frecuente dentro de nuestra población fue el B con un 30.30% y el A con un 27.27%. Entre los pacientes estudiados no se presentó ninguno que tuviera el serotipo C.

En población infantil los serotipos A y B fueron encontrados en la misma prevalencia 33.3% para cada uno y un 16.7% no identificado para ningún serotipo.

Respecto a la población adulta estudiada el serotipo más prevalente encontrado fue el B con un 26.6%.para el A 20% y un 53.3% no tipificable.

Se encontró infección mixta (mas de un serotipo) en el 9.09% de los pacientes estudiados y solo fue en niños., algo hasta el momento no reportado para M. catarrhalis.